研究提出植物单细胞制备新方法。高通量单细胞转录组测序技术（scRNA-seq）用于植物与农学研究时，单细胞制备存在技术挑战。近日，中国科学院分子植物科学卓越创新中心等通过底层技术创新，开发了新的植物单细胞制备方法FX-Cell。该方法提升了单细胞制备效率，实现了难以酶解植物组织、农田及冻存样品的scRNA-seq，为加速植物细胞单细胞图谱绘制提供了技术支撑。
研究团队改进了现有的原生质体制备方法。团队发现，提高酶解温度可以提高酶解效率。为避免高温酶解过程中带来的转录组变化，团队开发了组织固定方法——在酶解前，将新鲜的植物样品在Farmer溶液中进行固定。为避免高温酶解时细胞中mRNA的降解，团队进一步利用基于GMP Sepharose/Agarose柱的亲和纯化方法，去除了细胞壁酶解液中的RNase。团队还发现，在原生质体制备过程中添加tRNA和tri-GMP等RNase抑制剂可以保护mRNA，提高其稳定性，从而提高单个细胞的基因捕获数量。
水稻和拟南芥根尖的测试显示，FX-Cell具有可重复性高、单个细胞基因捕获数量与常规scRNA-seq持平且优于snRNA-seq的优点。植物组织在酶解前就已固定，因此在所获的单细胞图谱中，原生质体化带来的转录组改变被基本消除。
在上述工作的基础上，团队发现植物样品具有良好的耐受性，并开发了FX-Cell衍生技术——FXcryo-Cell和cryoFX-Cell。FXcryo-Cell是将固定好的样品储存在-80°C后再进行高温酶解；cryoFX-Cell是将样品冻于液氮或储存在-80°C后，再进行固定和高温酶解。以水稻根尖为例，FXcryo-Cell与cryoFX-Cell所获得的单细胞图谱质量与FX-Cell相当。
实例证明FXcryo-Cell与cryoFX-Cell技术具有广阔的应用前景，可以高质量地完成难以酶解组织、农田样品和扰动样品的scRNA-seq。
相关研究成果在线发表在《自然-方法》（Nature Methods）上。研究工作得到农业生物育种重大项目、国家自然科学基金、中国科学院战略性先导科技专项（B类）等的支持。
FX-Cell及其衍生技术流程
FX-Cell及其衍生技术的应用
研究团队单位：分子植物科学卓越创新中心
